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啤酒分析操作步骤及方法

来源: 啤酒网 2014-03-16 19:47:12
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[导读推筒子官网下载] 1水质分析: 1 1碱度的测定: 1 1 1试剂:1 1 1 1 不含二氧化碳水,用于制备和稀释溶液。 1 1 1 2 0 1%酚酞指示剂:0 1克酚酞溶于9


 4  麦汁的理化分析;
4.1 麦汁PH值的测定
4.1.1仪器  PH计
4.1.2试剂  PH=4.008和PH=6.86(均为25℃)缓冲溶液。
4.1.3 操作  按PH计使用说明书操作。
4.2 总酸的测定
4.2.1 仪器  一般玻璃仪器
4.2.2 试剂  1 %酚酞指示剂及0.1mol/L氢氧化钠标准溶液。
4.2.3 操作   吸取麦汁10ml于250ml三角瓶中,加90ml水,加2-3滴1%酚酞指示剂,用0.1mol/L氢氧化钠标准溶液滴定至微红色。另取100ml水加2-3滴1%酚酞指示剂做空白试验。
4.2.4 计算
V=10c(V2-V1)
式中V—100ml麦汁中消耗1mol/L氢氧化钠标准的毫升数。
c—氢氧化钠标准溶液的摩尔浓度,mol/L。
V2—0.1mol/L氢氧化钠标准溶液的消耗量,ml。
V1—空白试验消耗0.1mol/L氢氧化钠标准溶液的体积,ml。
10—取样量换算成100ml麦汁的系数 。
4.3 色度的测定
按EBC比色计测定。
4.4 总还原糖的测定
4.4.1 仪器   50ml滴定管、250ml三角瓶、可调电炉。
4.4.2试剂  
4.4.2.1 1%次甲基蓝指示剂  称取1g次甲基蓝用水稀释至100ml。
4.4.2.2 30%醋酸溶液  量取28.5ml冰醋酸用水稀释至100ml。
4.4.2.3 0.5%淀粉溶液  称取0.5g于105℃烘2小时的可溶性淀粉,用少量水调成糊状,再用煮沸的水稀释至100ml。
4.4.2.4 0.1mol/L硫代硫酸钠标准溶液
A配制  称取硫代硫酸钠26g或无水硫代硫酸钠16g及0.2g无水碳酸钠溶于1000ml水中,缓缓煮沸10分钟,冷却。将溶液保存于棕色具塞瓶中,放置1-2周后过滤备用。使用前进行标定。
B标定  称取于120℃烘干至恒重的基准重铬酸钾0.15-0.2g,称准至0.0001g。置于500ml具塞锥形瓶(或碘量瓶)中,溶于25ml煮沸后冷却的水中加2g碘化钾及20ml4mol/L硫酸。摇匀。待碘化钾溶解后于暗处放置10分钟,加150ml水,用配制好待标定的硫代硫酸钠溶液滴定。近终点时加入3ml0.5%淀粉指示剂 ,继续滴定至溶液由蓝色转变为亮绿色(亮蓝绿色)为终点。同时做空白试验。按下式计算:
C=m/0.04903(V2-V1)
式中C—硫代硫酸钠标准溶液的浓度c(Na2S2O3),mol/L;
m—重铬酸钾的质量,g;
V2—滴定时消耗硫代硫酸钠溶液的体积,ml;
V1—空白试验消耗硫代硫酸钠溶液的体积,ml;
0.04903—重铬酸钾的摩尔质量,kg/mol。
4.4.2.5  斐林溶液
A溶液   称取34.639g结晶硫酸铜用水溶解后稀释至500.0ml。
B溶液   称取173g酒石酸钾钠(NaKC4H4O6.4H2O)和50g氢氧化钠,混合后溶于水中,稀释至500.0ml。
斐林溶液的标定:
吸取A溶液10.00ml注入250ml三角瓶中,加4ml30%醋酸溶液和3g碘化钾,再加25ml煮沸后冷却的水,使碘化钾溶解,以0.1mol/L硫代硫酸钠标准溶液滴定使溶液呈微黄色,加硫氰酸铵2g,0.5%淀粉溶液3ml,搅拌后继续滴定至蓝色消失。斐林溶液的校正系数f计算如下:f=0.06355cV/10.0.01763
式中f—斐林溶液的校正系数;
c-硫代硫酸钠标准溶液的浓度c(Na2S2O3),mol/L。
V—滴定时消耗硫代硫酸钠标准溶液的体积,ml。
0.06355—铜的摩尔质量,kg/mol;
0.01763—斐林溶液的A溶液中铜的质量浓度,g/ml。   
4.4.3 操作:
4.4.3.1 吸取麦汁5.0ml用水稀释至200ml。
4.4.3.2 分别吸取斐林溶液A和B溶液各5.0ml注入250三角瓶中,加10ml水稀释,加热使其在5分钟内沸腾,在沸腾状态下,用滴定管滴入稀释麦汁至蓝色即将消失时,加1-2滴次甲基蓝指示剂,继续滴定至溶液由蓝色变为红色。
4.4.3.3分别吸取斐林溶液A和B溶液各5.0ml注入250ml三角瓶中,加少于预备试验所消耗的稀释麦汁约1ml,加热至沸后,加1-2滴次甲基蓝指示剂,用稀释麦汁滴定至溶液由蓝色变为红色即为终点。记录消耗稀释麦汁的总量。
4.4.4计算
4.4.4.1根据稀释麦汁在正式测定中的用量,从附录表查得相应的麦芽糖量C1
4.4.4.2计算100ml麦汁样品中还原糖的含量  C1=fnC0/1000
4.4.4.3计算每100g麦汁浸出物中还原糖的含量 C=fc0n/1000WD
式中C1—麦汁总还原糖(以麦芽糖计),g/100ml麦汁;
C2—麦汁总还原糖(以麦芽糖计),g/100g麦汁浸出物;
f—斐林溶液的校正系数;
C0—从附录表查得麦芽糖量,mg/100ml麦汁;
n—麦汁的稀释倍数;
W—麦汁中浸出物的含量;
D—麦汁在20℃时的相对密度。
  操作时应严格控制加热时间。由沸腾至滴定完应在3分钟内结束。
4.5苦味质的测定
4.5.1仪器  35ml派来克斯硬质玻璃血清管,带有螺纹颈口、塑料盖、回转震荡器,振幅2-3cm、离心机(转速3000)、紫外分光光度计。
4.5.2   试剂       
4.5.2.16mol/L盐酸  250ml浓盐酸加250ml重蒸馏水;
4.5.2.2异辛烷;
4.5.2.3重蒸馏水。
4.5.3   操作
4.5.3.1取20℃的麦汁5ml于35ml离心管内,并加入0.5ml6mol/L盐酸和20ml异辛烷。
4.5.3.2再加入3个玻璃球,拧上带有聚丙烯塞的盖,并用回转振荡器(130转/分钟)在20℃下震荡15分钟。
4.5.3.3 以每分3000转离心3分钟。
4.5.3.4 取离心后上层清液置于1cm石英比色皿中,在波长275nm处,以5ml重蒸水代替麦汁用同样方法作为空白,测其吸光度。(书上是直接用异辛烷做为空白,测其吸光度)。
4.5.4   计算  C=50A275
式中C—麦汁样品中苦味质含量,BU;
A275—波长275nm处的吸光度。
4.6麦汁总可溶性氮的测定
  4.6.1仪器及试剂:与测总氮相同。            
 
4.6.2样品的消化  吸取过滤后的麦芽汁10.00ml,小心转移到已干燥的凯氏烧瓶中,加入浓硫酸2-3ml,小心蒸发至近干。加入混合催化剂约10克,缓缓加入浓硫酸20ml,摇匀。在通风厨内文火加热至泡沫停止发生后,大火加热使之沸腾,待溶液清亮后,再继续加热20-30分钟取下。
4.6.3蒸馏   将消化液放置使其自然冷却后,缓缓加入不含氮的水250ml,摇匀,冷却。向凯氏烧瓶内放入约2克锌粒或几块小瓷片。连接凯氏烧瓶与蒸馏装置,溜出管的尖端插入盛有25ml2%硼酸溶液和0.5ml溴甲酚绿混合指示剂的锥形瓶中,溜出管的尖端应在液面以下。通过加液漏斗加入70ml10mol/L(40%)氢氧化钠溶液于凯氏烧瓶中,轻轻摇匀,使内容物混合均匀,然后加热蒸馏,待溜出液达到180ml时停止蒸馏。
4.6.4滴定   用0.1mol/L盐酸或硫酸标准溶液滴定溜出液,至绿色消失转变为灰色为终点。记录消耗酸标准溶液的体积。
同时操作1,2,3步骤用10.00ml水代替麦汁做一不加样品的空白试验。记录消耗酸标准溶液的体积。
4.6.5计算  麦汁总可溶性氮的计算
  W=10(V2-V1)C14
 式中W—麦汁总可溶性氮(N,mg/100ml麦汁);
     V1—空白试验滴定时消耗盐酸或硫酸标准溶液的体积,ml;
     V2—样品试验滴定时消耗盐酸或硫酸标准溶液的体积,ml;
c--盐酸或硫酸标准溶液的浓度c(HCI)或c(1/2H2SO4),mol/L;
      14—氮的摩尔质量M,g/mol;
      10—换算成100ml的稀释倍数。
4.7麦汁可凝固性氮的测定
4.7.1仪器
4.7.1.1食盐水浴  40g食盐加100ml自来水。
4.7.1.2回流冷凝管。
4.7.1.3总氮测定所用仪器。
4.7.2试剂   与总氮测定试剂相同
4.7.3操作
4.7.3.1取麦汁20ml置于500ml凯氏烧瓶,接上回流冷凝管,将烧瓶浸入食盐水浴中直至瓶颈,加热煮沸5h。
4.7.3.2过滤,用热水洗涤沉淀数次,每次20ml。
4.7.3.3将附有沉淀的滤纸放回原烧瓶,按总氮测定中操作测定沉淀中凝结性氮的含量。
4.7.3.4用 20ml蒸馏水代替样品同样操作对滤纸做一相应的空白测定。
4.7.4 计算
可凝固性氮W(N,mg/100ml麦汁)=5(V2C14-V1C14)
 
式中V2C14—为毫克凝固性氮;mg/20ml;
      V1C14—滤纸的毫克氮,mg/20ml;
      V2—样品测定中中和氨的标准酸液用量,ml;
      C--为标准酸液的摩尔浓度,mol/L;
V1—空白测定中标准酸液的用量,ml;
5—为取样量换算成100ml的系数;
14—为氮的摩尔质量,g/mol。
用下式换算为麦汁浓度12%时凝固性氮的含量:N=12W/P
式中W—实际式样凝固性氮含量,mg/100ml;
P—麦汁浓度,%。
4.8麦汁浓度的测定
用比重瓶称其麦汁的比重按下式计算
D=m2-m/m1-m
式中m2—密度瓶加麦汁的质量;
m—密度瓶的质量;
m1—密度瓶加水的质量;
D—麦汁的相对密度。
查比重与浸出物对照表得麦汁浓度。
4.9麦汁a-氨基氮的测定
4.9.1仪器;
  高精度恒温水浴、可见分光光度计、沸腾水浴。
4.9.2试剂;
4.9.2.1显色剂 
4.9.2.1.1 10gNa2HPO4.12H2O;
4.9.2.1.2 6gKH2PO4;
4.9.2.1.3 0.500g水合茚三酮;
4.9.2.1.4 0.300g果糖。
       称取以上试剂混匀,用水溶解并稀释至100ml,摇匀(此溶液用棕色瓶装在冰箱内可保存二周,PH应为6.6-6.8)。           4.9.2.2稀释溶液
  称取KIO3(碘酸钾)2g溶于600ml水中,加入96%乙醇400ml,冰箱内5℃保存。
4.9.2.3甘氨酸标准储备液
 称取甘氨酸0.1072g用水溶解并定容至100.0ml,摇匀,于冰箱内储存。此溶液a-氨基氮的含量为200mg/L.
4.9.2.4甘氨酸标准使用液(使用时现配)
吸取甘氨酸标准储备液1.00ml,用水稀释至100ml。此标准溶液的a-氨基氮含量为2mg/L。
4.9.3操作
4.9.3.1样液的制备  取麦汁1.00ml用水稀释至100ml摇匀。
4.9.3.2取7支试管并编号,于1、2、3管中分别加入上述稀释过的样液2.0ml,4号管中加入水2.0ml,5、6号管中分别加入甘氨酸标准使用液2.0ml。各加入显色剂1.00ml,摇匀,并分别放一颗玻璃球于试管口上,以避免蒸发损失,将试管放入恒温沸水浴中准确加热16分钟。
4.9.3.3立即在20℃水浴中冷却20分钟。各加入碘酸钾稀释溶液5.00ml,混匀,并在30分钟内,在570nm波长下,用1cm比色皿以4号管为空白,分别测其吸光度。
4.9.4计算
   C=2nA1/A2
式中c—麦汁中a-氨基氮的质量浓度,mg/L;
A1—样品溶液的平均吸光度;
A2—甘氨酸标准溶液的平均吸光度;
2—甘氨酸标准溶液中a-氨基氮的含量,mg/L;
n—样品溶液的稀释倍数(若按操作①将1ml样品稀释至100ml,n为100)。
计算结果保留两位小数。
  注意事项;
必须严防任何外界痕量氨基酸的引入,为此有关玻璃器皿都必须仔细洗涤,洗净后只能接触其外部表面。移液管必须用吸球吸,不能用嘴吸,以免唾液引入氨基酸,拿玻璃球最好用镊子。
测定中加入果糖作为还原性发色剂。碘酸钾在稀溶液中使茚三酮保持氧化态,以阻止进一步发生不希望的生色反应。
4.10  蛋白质隆丁区分
 4.10.1总氮(总可溶性氮)的测定(同4.6操作一样):
 4.10.1.1样品的消化:吸取麦汁10ml(或25ml),小心转移到已干燥的凯氏烧瓶中,加入浓硫酸2-3ml,小心蒸发至近干。加入混合催化剂10g,,缓缓加入浓硫酸20ml,摇匀。在通风橱内文火加热至泡沫停止发生后,大火加热使之沸腾,待溶液清亮后再继续加热20-30分钟取下。
4.10.1.2蒸馏:将消化液放置使其自然冷却后,缓缓加入不含氮的水250ml摇匀冷却。向凯氏烧瓶内放入约2g锌粒(也可不放)。连接凯氏烧瓶与蒸馏装置,溜出管的尖端插入盛有约25ml2%硼酸溶液和0.5ml溴甲酚绿混合指示剂的500ml锥形瓶中,溜出管的尖端应在液面之下,通过加液漏斗加入70ml10mol/L氢氧化钠溶液于凯氏烧瓶中,轻轻摇匀使内容物混合均匀,然后加热蒸馏,待溜出液达到180ml时停止蒸馏。
4.10.1.3滴定;用0.1mol/L盐酸或硫酸标准溶液滴定溜出液,至绿色消失转变为灰色为终点,同时按1,2,3,步骤用10ml(或25ml)水代替麦芽汁做空白试验。按下式计算:
    W(总氮,mg/100ml)=10(Ⅴ2-Ⅴ1).c.14(取10ml时公式)
    W(总氮,mg/100ml)=4(Ⅴ2-Ⅴ1).c.14(取25ml时公式)
 4.10.2用单宁沉淀后,滤液中氮的测定:
    取100ml麦芽汁于200ml容量瓶中,加水至180-185ml,加4ml相对密度为1.4的硫酸,混匀。置20℃水浴中保温15-20分钟。加10ml单宁溶液,加水至刻度摇匀。立即用折叠纸过滤,重复过滤至澄清。取滤液50ml,用凯氏定氮法测其含氮量:总氮(N,mg/100ml)=4(V2-V1).c.14。因此,用单宁沉淀后50ml滤液中含氮量(mg)是:W1(N,mg/50ml)=2(Ⅴ2-Ⅴ1).c.14
4.10.3用磷钼酸沉淀后,滤液中氮的测定:
取100ml麦芽汁于200ml 容量瓶中,加75ml水及10ml钼酸钠溶液摇匀,置20℃水浴中保温15-20分钟,加10ml相对密度为1.4的硫酸,加水至刻度摇匀。立即用折叠纸过滤,重复过滤至澄清。取滤液50ml,用凯氏定氮法测其含氮量:W2(总氮,mg/50ml)=2(Ⅴ2-Ⅴ1).c.14
 
三个区分中氮含量(mg/100ml)分别为A、B、C
 
A=(W-W1).200/50.1000/Ⅴ         A区分=A/W.100%
 
 
 
B=(W1-W2).200/50.100/Ⅴ         B区分=B/W.100%
 
 
 
 
C=W2.200/50.100/Ⅴ               C区分=C/W. 100%
 
V为取样量(测总氮时的取样量),ml。
 
 
 隆丁区分所使用的仪器和试剂;
  蛋白质测定仪、消化炉、高精度恒温水浴。
1,   浓硫酸;
2,   2%硼酸;
3,   混合催化剂;二氧化钛:结晶硫酸铜:硫酸钾=0.3:0.3:10。
4,   400g/L氢氧化钠  溶400g氢氧化钠于不含氮的水中,再稀释至1L,静置,使碳酸钠沉淀,吸出上层澄清溶液,储于聚乙烯塑料瓶或带有橡皮塞的瓶内,此溶液的相对密度应为1.36以上。
5,   溴甲酚绿混合指示剂  0.1g溴甲酚绿溶于100ml95%乙醇溶液中;0.1g甲基红溶于100ml95%乙醇溶液中,两液按10:4混合。此指示剂在酸性溶液中呈粉红色,在碱性溶液中呈蓝色,在终点呈灰色。
6,   不含氨的水取强碱性及强酸性阴离子交换树脂(用量2:1),依次填充于直径3cm长50cm的交换柱中,将水以每分钟3-5ml的流速通过交换柱。
7,   0.1mol/L盐酸或硫酸标准溶液c(HCI)或c(H2SO4)。
说明:
用单宁沉淀后高分子氮对温度的变化非常敏感,最好实验室温度能保持近似20℃.若用单宁沉淀后不能立即过滤,则在继续操作前,应在20℃放置15分钟。在低于20℃时,滤液能重新混浊,甚至可以形成沉淀,这沉淀不能用过滤法除去。在测定滤液的含氮量前应充分摇匀。因此用单宁沉淀后应立即过滤。
4.11最终发酵度的测定
   原理:在一定发酵条件下,将麦汁接种酵母使发酵至终了,通过测麦汁和发酵液的相对密度和浓度,可以计算出最终发酵度。
 4.11.1仪器:
4.11.1.1量筒250ml
4.11.1.2锥形三角瓶500至1000ml
4.11.1.3天平
4.11.1.4振荡器
4.11.1.5装在锥形烧瓶上的U形玻管
4.11.1.6附温比重瓶
4.11.2操作
4.11.2.1所使用的玻璃仪器必须干燥,以免稀释麦汁,酵母(酵母必须采用最新鲜、活力高的酵母)使用前先在布氏漏斗上抽滤成干饼状。
4.11.2.2取300—500ml麦汁,必须先经煮沸,以破坏酶活性。冷却并用蒸馏水将其调至原重量,用比重瓶测麦汁相对密度。
4.11.2.3然后取200ml麦汁移入500ml锥形瓶中,此瓶配有塞子,塞子上有内含水的U形玻管,操作时注意不要将U形玻管中的水混进瓶内。
4.11.2.4加入15克压榨酵母,摇动,使其均匀扩散在麦汁中。
4.11.2.5三角瓶在20或25℃下发酵,隔一定时间取出部分发酵液进行相对密度测定,至达到最低数值不变。
4.11.2.6对10%--12%(质量分数)的麦汁来说,在上述发酵温度下,一般18—30小时即可发酵完毕。
4.11.2.7发酵期间,三角瓶不断振荡,使所有酵母保持悬浮状态。
4.11.3计算
将麦汁的最初和最终相对密度换算成相应的质量容量百分数,如果所得为质量百分数,按下列公式计算
  E=E1Xd240或E2=E4X d240
式中E1—100g麦汁中浸出物含量,g;
    E—100ml麦汁中浸出物克数,g;
    E4—100g啤酒外观浸出物克数,g;
    E2—100ml啤酒外观浸出物克数,g;
d240—相对密度(20℃液体与4℃水的质量比)
则外观发酵度可计算出
V=(E- E2)/EX100%
V-外观发酵度
E--100ml麦汁中浸出物克数,g;
E2--100ml啤酒外观浸出物克数,g。
真正发酵度(糖不再下降时为最终发酵度)可用外观发酵度乘以系数0.819求得。
4.12  糖化麦汁碘值测定
糖化麦汁碘值的测定实验:
  麦汁中的高分子糊精和淀粉在加入酒精后会沉淀析出,经离心分离后,将沉淀溶解于磷酸盐缓冲液中,加入碘液,因分子量及支链数的不同而形成由蓝到红的颜色,用分光光度计测定其吸光度。
4.12.1试剂:
磷酸盐缓冲溶液(0.1mol/L,PH3.5):先配制0.1moL/LKH2PO4溶液,再用0.1moL/L的磷酸溶液调节至pH3.5。
0.02moL/L碘标准溶液(1/2I2):称取1.27g碘和2.50g碘化钾,用少许水溶解后稀释至500mL,摇匀,贮存于棕色瓶中。
碘液空白值测定:吸取5mlPH3.5磷酸盐缓冲溶液和0.25ml0.02mol/L的碘标准溶液(1/2I2)于2cm比色皿中混匀,以磷酸盐缓冲溶液为参比液,在578nm下测定其吸光度(EJ)。
4.12.2样品测定:吸取2ml离心麦汁或除气后的啤酒于离心管中,加入8ml95%酒精,振荡10min,然后以2500转/分钟离心5分钟。小心地将上清液倒掉,再加入4ml磷酸盐缓冲液,振荡10min,再以2500转/分钟离心5分钟。吸取1ml上清液和4ml磷酸盐缓冲液于2cm比色皿中,以磷酸盐缓冲液做空白,在578nm处测定其吸光度EZ。用加样器加入0.5(?应为0.25吧)ml0.02mol/L碘标准溶液(1/2I2)至上述制备的样品中,用搅拌棒马上搅拌均匀,在578nm下测量30秒后的最大吸光度(EH)。
4.12.3计算公式:△E=(EH- EJ-0.952x EZ)x10
式中 :△E—样品的碘值
        EH—加入0.02mol/L碘标准溶液(1/2I2)后吸光度
        EJ--加入0.02mol/L碘标准溶液(1/2I2)前吸光度
        EZ—空白吸光度
        0.952—体积变化系数(5.0ml:5.25ml)
     10—稀释倍数(1+4)x2
备注:
此碘值测定方法已经被本人修改,如存在错误之处请给与指教。
4.13总多酚的测定
原理 
   在碱性溶液(PH=10--12)中,多酚类物质与三价铁生成较稳定的红色化合物,颜色深浅与多酚类物质含量成正比,用分光光度计测定。
4.13.1仪器
4.13.1.1分光光度计
4.13.1.2离心机
4.13.1.3比色管:25ml 、50ml
4.13.2试剂
4.13.2.1羧甲基纤维素钠/乙二胺四乙酸二钠溶液    在500ml水中慢慢加入纯羧甲基纤维素钠10.0g和乙二胺四乙酸二钠2.0g,边加边搅拌,待全部溶解后,停止搅拌,静置1—3h,全部移入1L容量瓶中并定容。必要时,可用离心机离心,使溶液澄清。该溶液每月需重新配制。
4.13.2.2铁试剂  称取绿色柠檬酸铁铵3.5g,加水溶解并定容至100ml。该溶液应完全澄清,每周(或更短时间)配制。
4.13.2.3氨试剂  氨水+水=1+2。
4.13.3操作
4.13.3.1空白管 
吸取式样(经除气但未过滤的20℃啤酒)10ml于25ml容量瓶中,加羧甲基纤维素钠/乙二胺四乙酸二钠溶液8ml,充分混匀,加入氨试剂0.5ml混匀。用水定容,摇匀,放置10min后作空白使用。
4.13.3.2式样管
吸取式样(经除气但未过滤的20℃啤酒)10ml于25ml容量瓶中,加羧甲基纤维素钠/乙二胺四乙酸二钠溶液8ml,充分混匀,加入铁试剂0.5ml,混匀。然后加入氨试剂0.5ml,混匀。用水定容摇匀。放置10min后,以空白管作参比液,用10mm比色皿,在波长600nm下,测定其吸光度。
试样的稀释
若总多酚超过400mg/L,式样就需要稀释。式样和空白都用50ml容量瓶。在取样、添加了羧甲基纤维素钠/乙二胺四乙酸二钠溶液和铁试剂后,加水25ml,充分混匀,再加氨试剂,用水定容,摇匀。
4.13.4计算
X=A600x820xf
式中X—式样的总多酚含量,mg/L;
  A600—在波长600nm下,测得的吸光度;
  f—稀释度(使用50ml容量瓶时,稀释度为2)
  结果取整数 
允许差: 总多酚含量为180mg/L时,重复性误差的变异系数3%,再现性误差的变异系数6%。
注明:
①    啤酒式样必须澄清透明,否则就需要通过离心方法使之完全澄清透明(但不能用过滤法);注意离心也会除去一些已沉淀的多酚物质,使老化啤酒测试结果偏低,为此,对于轻度混浊啤酒,可用等体积水稀释,以增加其透明度。
②            在测定过程中,不论是式样还是空白,每加一种试剂后,都要充分混匀,再加下一种试剂。
5发酵液分析

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